Condición y asignación de energía durante el ciclo reproductivo de la cabrilla patagónica Sebastes oculatus de la plataforma continental argentina
DOI:
https://doi.org/10.47193/mafis.3842025011002Palabras clave:
Reproducción, viviparidad, condición del cuerpo, densidad energéticaResumen
La cabrilla patagónica (Sebastes oculatus Valenciennes 1833) es una especie vivípara que habita las aguas de la plataforma media y exterior, así como los arrecifes rocosos a lo largo de la costa patagónica de Argentina. En la actualidad, la estrategia de asignación de energía de esta especie durante la reproducción sigue siendo desconocida. Por lo tanto, en este estudio, analizamos las variaciones en los índices de condición bioquímica y bioenergética de hembras adultas a lo largo de un ciclo estacional. Un total de 157 especímenes fueron colectados por observadores a bordo de buques comerciales entre noviembre de 2016 y septiembre de 2017. Se evaluaron el índice gonadosomático (GSI), la condición morfofisiológica (índice hepatosomático HSI y factor de condición relativa Kn) y la composición proximal (lípidos, proteínas y humedad), junto con la densidad energética en músculo, hígado y gónadas. Los resultados mostraron un aumento en las reservas de lípidos y proteínas en el músculo y las gónadas durante el invierno, coincidiendo con el inicio de la maduración. También se observó que la densidad energética (kJ g-1) en el hígado y el músculo disminuye en primavera, coincidiendo con el mayor desarrollo gonadal (GSI). Los valores más altos de densidad energética en el músculo se registraron durante el invierno, lo que coincide con una mayor actividad alimentaria de la especie, lo que sugiere una estrategia reproductiva más cercana a un capital breeder, con almacenamiento de energía antes del inicio del desove.
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Referencias
Alonso Fernández A. 2011. Bioenergetics approach to fish reproductive potential: case of Trisopterus luscus (Teleostei) on the Galician Shelf (NW Iberian Peninsula) [PhD thesis]. Vigo: Departamento de Ecología y Biología Animal, Universidad de Vigo. 280 p.
Berkeley SA, Chapman C, Sogard SM. 2004. Maternal age as a determinant of larval growth and survival in a marine fish, Sebastes melanops. Ecology. 85: 1258-1264. DOI: http://doi.org/10.1890/03-0706
Bligh EG, Dyer WJ. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 37: 911-917.
Brown-Peterson NJ, Wyanski DM, Saborido-Rey F, Macewicz BJ, Lowerre-Barbieri SK. 2011. A standardized terminology for describing reproductive development in fishes. Mar Coast Fish. 3 (1): 52-70. DOI: https://doi.org/10.1080/19425120.2011.555724
Brooks S, Tyler CR, Sumpter JP. 1997. Egg quality in fish: what makes a good egg? Rev Fish Biol Fish. 7 (4): 387-416.
Calow P. 1985. Adaptive aspects of energy allocation. In: Tytler P, Calow P, editors. Fish energetics: new perspectives. London: Croom Helm. p. 13-31.
Collins AL, Anderson TA. 1995. The regulation of endogenous energy stores during starvation and refeeding in the somatic tissues of the golden perch. J Fish Biol. 47: 1004-1015.
Cushing DH. 1990. Plankton production and year-class strength in fish populations: an update of the match/mismatch hypothesis. Adv Mar Biol. 26: 249-293.
Di Rienzo JA, Casánoves F, Balzarini MG, González L, Tablada M, Robledo CW. 2017. InfoStat versión 2017. Grupo InfoStat. Universidad Nacional de Córdoba. https://www.infostat.com.ar.
Domínguez-Petit R. 2006. Study of the reproductive potential of the Merluccius merluccius in the Galician shelf [PhD thesis]. Vigo: Instituto de Investigaciones Marinas, Universidad de Vigo. 253 p.
Domínguez-Petit R, Saborido-Rey F. 2010. New bioenergetic perspective of European hake (Merluccius merluccius L.) reproductive ecology. Fish Res. 104: 83-88.
Domínguez-Petit R, Saborido-Rey F, Medina I. 2010. Changes of proximate composition, energy storage and condition of European hake (Merluccius merluccius, L. 1758) through the spawning season. Fish Res. 104: 73-82.
Dutil JD, Gauthier J, Lambert Y, Fréchet A, Chabot D. 2003. Stock rebuilding and fish bioenergetics: low productivity hypothesis. Canadian Science Advisory Secretariat Research Document 2003/60. 39 p.
Eigenmann CH. 1892. The fishes of San Diego, California. Proc US Natl Mus. 15: 123-178.
Eliassen JE, Vahl O. 1982. Seasonal variations in biochemical composition and energy content of liver, gonad and muscle of mature and immature cod, Gadus morhua, from Balsfjorden, northern Norway. J Fish Biol. 20: 707-716.
Galván DE, Venerus LA, Irigoyen AJ. 2009. The reef-fish fauna of the Northern Patagonian gulfs of Argentina, Southwestern Atlantic. Open Fish Sci J. 2: 90-98.
García del Moral R. 1993. Laboratorio de anatomía patológica. McGraw-Hill Interamericana. 659 p.
Grift RE, Heino M, Rijnsdorp AD, Kraak SBM, Dieckmann U. 2007. Three-dimensional maturation reaction norms for North Sea plaice. Mar Ecol Prog Ser. 334: 213-224.
Haug T. 1990. Biology of the Atlantic halibut Hippoglossus hippoglossus (L., 1758). Adv Mar Biol. 26: 1-70.
Herbes S, Allen C. 1983. Lipid quantification of freshwater invertebrates: method modification for microquantitation. Can J Fish Aquat Sci. 14: 1315-1317.
Heyer CJ, Miller TJ, Binkowski FP, Caldarone EM, Rice JA. 2001. Maternal effects as a recruitment mechanism in Lake Michigan yellow perch (Perca flavescens). Can J Fish Aquat Sci. 58: 1477-1487.
Hoque MT, Yusoff FM, Law AT, Syed MA. 1998. Effect of hydrogen sulphide on liver somatic index and Fulton’s condition factor in Mystus nemurus. J Fish Biol. 52: 23-30.
Hunter JR, Macewicz BJ, Lo NCH, Kimbrell CA. 1992. Fecundity, spawning, and maturity of female Dover sole Microstomus pacificus, with an evaluation of assumptions and precision. Fish Bull US. 90: 101-128.
Jakob EM, Marshall SD, Uetz GW. 1996. Estimating fitness: a comparison of body condition indices. Oikos. 77: 61-67.
Jobling M. 1995. Environmental biology of fishes. Fish and Fisheries Series 16. London: Chapman and Hall. 455 p.
Jørgensen C, Fiksen O. 2006. State-dependent energy allocation in cod (Gadus morhua). Can J Fish Aquat Sci. 63: 186-199.
Kjesbu OS, Klungsoyr J, Kryvi H, Witthames PR, Greer Walker M. 1991. Fecundity, atresia and egg size of captive Atlantic cod (Gadus morhua) in relation to proximate body composition. Can J Fish Aquat Sci. 48: 2333-2343.
Kleiber M. 1975. The fire of life: an introduction to animal energetics. New York: Krieger Publishing Company. 453 p.
Lambert Y, Dutil J. 1997. Can simple condition indices be used to monitor and quantify seasonal changes in the energy reserves of Atlantic cod (Gadus morhua)? Can J Fish Aquat Sci. 54 (1): 104-112.
Lambert Y, Dutil J. 2000. Energetic consequences of reproduction in Atlantic cod (Gadus morhua) in relation to spawning level of somatic energy reserves. Can J Fish Aquat Sci. 57 (4): 815-825.
Leonarduzzi E. 2018. Bioenergética y condición nutricional de la merluza común, Merluccius hubbsi, del efectivo Patagónico y sus implicancias en el potencial reproductivo de la especie [PhD thesis]. Mar del Plata: Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad Nacional de Mar del Plata. 197 p.
Leonarduzzi E, Massa A, Manca E. 2010. Variación de la composición bioquímica en hembras de merluza común (Merluccius hubbsi) durante el ciclo reproductivo. Inf Invest INIDEP Nº 42/2010. 16 p.
Leonarduzzi E, Rodrigues KA, Macchi GJ. 2014. Proximate composition and energy density in relation to Argentine hake females (Merluccius hubbsi) morphometrics and condition indices. Fish Res. 160: 33-40.
López S. 2022. Ecología reproductiva de peces óseos en arrecifes rocosos bonaerenses [PhD thesis]. Mar del Plata: Universidad Nacional de Mar del Plata. 174 p.
Lowerre-Barbieri SK, Brown-Peterson NJ, Murua H, Tomkiewicz J, Wyanski D, Saborido-Rey F. 2011. Emerging issues and methodological advances in fisheries reproductive biology. Mar Coast Fish. 3: 32-51.
Lowry OH, Rosbrough NJ, Farr AL, Randall RJ. 1951. Protein measurement with the folin phenol reagent. J Biol Chem. 193: 265-275.
Lucas A. 1996. Bioenergetics of aquatic animals. London: Taylor and Francis.
MacFarlane R, Norton E, Bowers M. 1993. Lipid dynamics in relation to the annual reproductive cycle in yellowtail rockfish (Sebastes flavidus). Can J Fish Aquat Sci. 50: 391-401. DOI: https://doi.org/10.1139/f93-044
McBride RS, Somarakis S, Fitzhugh GR, Albert A, Yaragina NA, Wuenschel MJ, Alonso-Fernandez A, Basilone G. 2015. Energy acquisition and allocation to egg production in relation to fish reproductive strategies. Fish Fish. 16 (1): 23-57.
Macchi GJ, Pájaro M. 2003. Comparative reproductive biology of some commercial marine fishes from Argentina. Fisk Havet. 12: 67-76.
Macchi GJ, Rodrigues KA, Leonarduzzi E, Díaz MV. 2018. Is the spawning frequency of Argentine hake, Merluccius hubbsi, affected by maternal attributes or physical variables? Fish Res. 204: 147-155.
Maddock DM, Burton MPM. 1999. Gross and histological observations of ovarian development and related condition changes in American plaice. J Fish Biol. 53 (5): 928-944.
Marshall CT, Needle CL, Thorsen A, Kjesbu OS, Yaragina NA. 2006. Systematic bias in estimates of reproductive potential of an Atlantic cod (Gadus morhua) stock: implications for stock-recruit theory and management. Can J Fish Aquat Sci. 63: 980-994.
Marteinsdottir G, Begg GA. 2002. Essential relationships incorporating the influence of age, size, and condition on variables required for estimation of reproductive potential in Atlantic cod Gadus morhua. Mar Ecol Prog Ser. 235: 235-256.
Mello LGS, Rose GA. 2005. Seasonal growth of Atlantic cod: effects of temperature, feeding, and reproduction. J Fish Biol. 67: 149-170.
Morgan MJ 2008. Integrating reproductive biology into scientific advice for fisheries management. J Northwest Atl Fish Sci. 41: 37-51.
Morgan MJ, Lilly GR. 2006. The impact of condition on reproduction in Flemish Cap cod. J Northwest Atl Fish Sci. 37: 81-86.
Moser HG, Ahlstrom EH, Sandknop EM. 1977. Guide to the identification of scorpionfish larvae (family Scorpaenidae) in the Eastern Pacific with comparative notes on species of Sebastes and Helicolenus from other oceans. NOAA Tech Rep NMFS. 402.
Pájaro M, Macchi GJ, Leonarduzzi E, Hansen J. 2009. Spawning biomass of Argentine anchovy (Engraulis anchoita) from 1996 to 2004 using the daily egg production method. J Mar Biol Assoc UK. 89: 829-837.
Pavlov DA, Emel’yanova NG, Novikov GG. 2009. Reproductive dynamics. In: Jakobsen T, Fogarty MJ, Megrey BA, Moksness E, editors. Fish reproductive biology. Chichester: Wiley-Blackwell. p. 48-69.
Potts G, Wootton R. 1989. Fish reproduction: strategies and tactics. 3rd ed. London: Academic Press Limited.
Rocha-Olivares A, Rosenblatt RH, Vetter RD. 1999. Molecular evolution, systematics, and zoogeography of the rockfish subgenus Sebastomus (Sebastes, Scorpaenidae) based on mitochondrial cytochrome b and control region sequences. Mol Phylogenet Evol. 11: 441-458.
Rätz HJ, Lloret J. 2003. Variation in fish condition between Atlantic cod (Gadus morhua) stocks, the effect on their productivity and management implications. Fish Res. 60: 369-380.
Rijnsdorp AD, Daan N, Van Beek FA, Heesen HJL. 1991. Reproductive variability in North Sea plaice, sole and cod. ICES J Mar Sci. 47: 352-375.
Rodrigues KA, Macchi GJ, Massa A. 2013. Seasonal analysis of condition, biochemical and bioenergetic indices of females of Brazilian flathead, Percophis brasiliensis. Neotrop Ichthyol. 11 (1): 153-162.
Rodrigues KA, Leonarduzzi E, Macchi GJ, Militelli MI. 2018. Maternal condition, fecundity and oocyte quality of Argentine hake (Merluccius hubbsi) from the Northern stock. Fish Res. 197: 105-112. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fishres.2017.09.005
Rodrigues KA, Militelli MI, Macchi G. 2024. Reproductive cycle, spawning and fecundity of Sebastes oculatus (Patagonian redfish) in the Argentine continental shelf. Ichthyol Herpetol. 112 (3): 353-364.
Saborido-Rey F, Macchi GJ. 2021. Introducción. Ecología reproductiva y pesquerías en el contexto Iberoamericano. Vigo: Red Iberoamericana de Investigación para el Uso Sostenible de los Recursos Pesqueros (RED INVIPESCA). p. 6-31.
Sánchez RP, Acha M. 1988. Development and occurrence of embryos, larvae and juveniles of Sebastes oculatus with reference to two Southwest Atlantic Scorpaenids: Helicolenus dactylopterus lahillei and Pontinus rathbuni. Meeresforsch. 32: 107-133.
Schulte-Hostedde AI, Zinner B, Millar JS, Hickling GJ. 2005. Restitution of mass-size residuals: validating body condition indices. Ecology. 86: 155-163.
Shulman G, Love R, editors. 1999. The biochemical ecology of marine fishes. Advances in marine biology. 36. San Diego: Academic Press. 351 p.
Sibly RM, Calow P. 1986. Physiological ecology of animals: an evolutionary approach. Oxford: Blackwell Scientific.
Stephens PA, Boyd IL, McNamara JM, Houston AI. 2009. Capital breeding and income breeding: their meaning, measurement, and worth. Ecology. 90: 2057-2067. DOI: https://doi.org/10.1890/08-1369.1
Tyler AV, Dunn RS. 1976. Ration, growth, and measures of somatic and organ condition in relation to meal frequency in winter flounder, Pseudopleuronectes americanus, with hypotheses regarding population homeostasis. J Fish Res Board Can. 33: 63-75.
Undeland I, Harrod M, Lingnert H. 1998. Comparison between methods using low-toxicity solvents for the extraction of lipids from herring (Clupea harengus). Food Chem. 61: 355-365.
Venerus LA, Ciancio JE, Riva-Rossi C, Gilbert-Horvath EA, Gosztonyi AE, Garza JC. 2013. Genetic structure and different color morphotypes suggest the occurrence and bathymetric segregation of two incipient species of Sebastes off Argentina. Naturwissenschaften. 100: 645-658.
Wourms JP. 1991. Reproduction and development of Sebastes in the context of evolution of piscine viviparity. Environ Biol Fishes. 30: 111-126.

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