La metamorfosis de la corvina rubia Micropogonias furnieri (Pisces, Sciaenidae)

Autores/as

  • Mara S. Braverman Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero (INIDEP), Paseo Victoria Ocampo Nº 1, Escollera Norte, B7602HSA - Mar del Plata, Argentina
  • Daniel Brown Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero (INIDEP), Paseo Victoria Ocampo Nº 1, Escollera Norte, B7602HSA - Mar del Plata, Argentina
  • E. Marcelo Acha Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero (INIDEP), Paseo Victoria Ocampo Nº 1, Escollera Norte, B7602HSA - Mar del Plata, Argentina - Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras (IIMyC), Universidad Nacional de Mar del Plata (UNMdP), Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET), Argentina

DOI:

https://doi.org/10.47193/mafis.3322020301107

Palabras clave:

Sciaenidae, transición larva-juvenil, ontogenia, morfología, morfometría

Resumen

La metamorfosis de los peces es un proceso ontogenético importante con un papel clave en la supervivencia de las primeras etapas y en el reclutamiento exitoso a las poblaciones adultas. La corvina rubia (Micropogonias furnieri) es un recurso comercial importante para las pesquerías costeras de la Argentina y Uruguay. Se estudió su metamorfosis mediante análisis morfométricos y morfológicos durante el desarrollo larvario. Se utilizaron los cambios en los caracteres morfomerísticos antes y después de la metamorfosis para determinar el intervalo de duración de esta transición mediante el Análisis de Componentes Principales. Se colectaron individuos (n = 430) de 4 a 41 mm de longitud estándar (LE) en el estuario del Río de la Plata (35,45° S, 56,35° W) en marzo de 2006. Los rangos de longitud de las etapas de desarrollo de los individuos se asociaron con la presencia de caracteres morfológicos clave. Durante las primeras etapas de vida, M. furnieri cambia de una larva de cabeza grande y forma robusta a una forma corporal más delgada y alargada. La mayoría de las variables morfométricas mostraron un punto de inflexión a los 15,2 mm LE, con un intervalo de confianza del 95% de 14,0-16,4 mm. La parte anterior del cuerpo crece más rápidamente durante las primeras etapas, probablemente relacionada con una estrategia de actividad alimentaria intensa. La adquisición del número definitivo de radios de la aleta pectoral y el inicio de la escamación determinan el comienzo de la metamorfosis a los 11-12 mm LE. Alrededor de los 18 mm LE, termina la escamación, se desarrollan las primeras barbillas y se cierra el primordio de los otolitos sagittae. La longitud-de-metamorfosis para M. furnieri se estableció entre 9 y 18 mm LE, dado el alto grado de superposición que presentaron los caracteres de desarrollo estudiados. Todos esos procesos son indicativos del inicio del período juvenil asociado al asentamiento y al comienzo de un estilo de vida orientado hacia el fondo.

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Acha EM, Mianzan HW, Guerrero RA, Carreto J, Giberto D, Montoya N, Carignan M. 2008. An overview of physical and ecological processes in the Río de la Plata Estuary. Cont Shelf Res. 28: 1579-1588.

Acha EM, Mianzan HW, Lasta CA, Guerrero RA. 1999. Estuarine spawning of the whitemouth croaker Micropogonias furnieri in the Río de la Plata, Argentina. Mar Freshwater Res. 50: 57-65.

Balon EK. 1984. Reflections on some decisive events in the early life of fishes. Trans Am Fish Soc. 113: 178-185.

Balon EK. 1989. The Tao of life: from the dynamic unity of polar opposites to self-organization. In: Bruton MN, editor. Alternative life-history styles of animals. Perspectives in vertebrate science. Vol. 6. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers. p. 7-40.

Boehlert GW, Mundy BC. 1988. Roles of behavioral and physical factors in larval and juveniles fish recruitment to estuarine nursery areas. Am Fish Soc Symp. 3: 51-67.

Boglione C, Giganti M, Selmo C, Cataudella S. 2003. Morphoecology in larval fin-fish: a new candidate species for aquaculture, Diplodus puntazzo (Sparidae). Aquacult Int. 11: 17-41.

Braverman MS, Acha EM, Gagliardini DA, Rivarossa M. 2009. Distribution of whitemouth croaker (Micropogonias furnieri, Desmarest 1823) larvae in the Río de la Plata estuarine front. Estuar Coast Shelf Sci. 82: 557-565.

Braverman M, Brown DR, Acha EM. 2015. Indirect validation of daily increments in whitemouth croaker (Micropogonias furnieri) larvae otoliths. Rev Invest Desarr Pesq. 26: 59-67.

Buratti CC, Santos BA. 2010. Otolith microstructure and pelagic larval duration in two stocks of the Argentine hake, Merluccius hubbsi. Fish Res. 106: 2-7.

Campana SE, Nielson JD. 1985. Microstructure of fish otoliths. Can J Fish Aquat Sci. 42: 1014-1032.

Carozza CR, Lasta CA, Ruarte C, Cotrina CP, Mianzan H, Acha EM. 2004. Corvina rubia (Micropogonias furnieri). In: Sánchez RP, Bezzi SI, editors. El Mar Argentino y sus recursos pesqueros. Tomo 4. Los peces marinos de interés pesquero. Caracterización biológica y evaluación del estado de explotación. Mar del Plata: Instituto Nacional de Investigación y Desarrollo Pesquero (INIDEP). p. 255-270.

Copp GH, Kováč V. 1996. When do fish with indirect development become juveniles? Can J Fish Aquat Sci. 53: 746-752.

Dando PR. 1984. Reproduction in estuarine fish. In: Potts GW, Wootton RJ, editors. Fish reproduction: strategies and tactics. London: Academic Press. p. 155-170.

Ditty JG, Fuiman LA, Shaw RF. 2003. Characterizing natural intervals of development in fishes: an example using blennies (Teleostei: Blenniidae). In: The big fish bang. Proceedings of the 26th annual larval fish conference. Bergen. p. 405-418.

Fuiman LA. 1983. Growth gradients in fish larvae. J. Fish Biol. 23: 117-123.

Fuiman LA, Poling KR, Higgs DM. 1998. Quantifying developmental progress for comparative studies of larval fishes. Copeia. 3: 602-611.

Fuiman LA, Werner RG. 2002. Fishery science: the unique contributions of early life stages. Oxford: Blackwell Science Ltd. Osney Mead. 326 p.

Govoni JJ. 2004. The development of form and function in fishes and the question of larval adaptation. Am Fish Soc Symp. 40: 1-7.

Gozlan RE, Copp GH, Tourenq JN. 1999. Comparison of growth plasticity in the laboratory and field, and implications for the onset of juvenile development in sofie, Chondrostoma toxostoma. Environ Biol Fish. 56: 153-165.

Haedrich RL. 1992. Estuarine fishes. In: Ketchum BH, editor. Ecosystems of the world. Estuaries and enclosed seas. Vol 26. Amsterdam: Elsevier. p. 185-207.

Huxley J. 1932. Problems of relative growth. New York: New York Dial Press.

Jolicoeur P. 1963a. The multivariate generalization of the allometry equation. Biometrics. 19: 497-499.

Jolicoeur P. 1963b. The degree of generality of robustness in Martes americana. Growth. 27: 1-27.

Juanes F, Conover DO. 1994. Rapid growth, high feeding rates, and early piscivory in young-of-the-year bluefish (Pomatomus saltatrix). Can J Fish Aquat Sci. 51: 1752-1761.

Kanou K, Kohno H, Sano M. 2004. Morphological and functional development of characters associated with settlement in the yellowfin goby, Acanthogobius flavimanus. Ichthyol Res. 51: 213-221.

Kolkovski S, Tandler A, Kissil GW, Gertler A. 1993. The effect of dietary exogenous digestive enzymes on ingestion, assimilation, growth and survival of gilthead seabream (Sparus aurata, Sparidae, Linnaeus) larvae. Fish Physiol Biochem. 12: 203-209.

Koumoundouros G, Ashton C, Xenikoudakis G, Giopanou I, Georgakopoulou E, Stickland N. 2009. Ontogenetic differentiation of swimming performance in Gilthead seabream (Sparus aurata, Linnaeus 1758) during metamorphosis. J Exp Mar Biol Ecol. 370: 75-81.

Kováč V. 2002. Synchrony and heterochrony in ontogeny (of fish). J Theor Biol. 217: 499-507.

Kováč V, Copp GH. 1999. Prelude: looking at early development in fishes. Environ Biol Fish. 56: 7-14.

Kováč V, Katina S, Copp GH, Siryova S. 2006. Ontogenetic variability in external morphology and microhabitat use of spirlin Alburnoides bipunctatus from the River Rudava (Danube catchment). J Fish Biol. 68: 1257-1270.

Lauff M, Hoffer R. 1984. Proteolytic enzymes in fish development and the importance of dietary enzymes. Aquaculture. 37: 335-346.

Macchi GJ, Christiansen HE. 1996. Análisis temporal del proceso de maduración y determinación de la incidencia de atresias en la corvina rubia (Micropogonias furnieri). Frente Marit. 16: 93-101.

Mann KH, Lazier JRN. 1996. Dynamics of marine ecosystems: biological-physical interactions in the oceans. Malden: Blackwell Science. 394 p.

McCormick MI, Makey L, Dufour V. 2002. Comparative study of metamorphosis in tropical reef fishes. Mar Biol. 141: 841-853.

Mianzan H, Lasta C, Acha EM, Guerrero R, Macchi GJ, Bremec C. 2001. The Río de la Plata Estuary, Argentina-Uruguay. In: Seeliger U, Kjerfve B, editors. Ecological studies. Coastal marine ecosystems of Latin America. Berlin: Springer-Verlag. p. 185-204.

Miller MJ, Nemerson DM, Able KW. 2003. Seasonal distribution, abundance, and growth of young-of-the-year Atlantic croaker (Micropogonias undulatus) in Delaware Bay and adjacent marshes. Fish Bull. 101 (1): 100-115.

Morales-Nin B, Aldebert Y. 1997. Growth of juvenile Merluccius merluccius in the Gulf of Lions (NW Mediterranean) based on otolith microstructure and length-frequency analysis. Fish Res. 30 (1-2): 77-85.

Morioka S, Machinandiarena L, Villarino MF. 2001. Preliminary information on internal structures of otoliths and growth of ling, Genypterus blacodes (Ophidiidae), larvae and juveniles collected off Argentina. Bull Japan Soc Fish Ocean. 65 (2): 59-66.

Moser HG. 1996. Principles and terminology. The early stages of fishes in the California current region. California cooperative oceanic fisheries investigations. Atlas. 33. p. 27-44.

Nikolioudakis N, Koumoundouros G, Kiparissis S, Somarakis S. 2010. Defining length-at-metamorphosis in fishes: a multi-character approach. Mar Biol. 157: 991-1001.

Osse JWM, van den Boogaart JGM. 1995. Fish larvae, development, allometric growth and the aquatic environment. ICES Mar Sci Symp. 201: 21-34.

Osse JWM, van den Boogaart JGM, van Snik GMJ, van der Sluys L. 1997. Priorities during early growth of fish larvae. Aquaculture. 155: 249-258.

Pavlov DA. 1999. Features of transition from larva to juvenile in fishes with different types of early ontogeny. Environ Biol Fish. 56: 41-52.

Pedersen BH, Nilssen EM, Hjelmeland K. 1987. Variations in the content of trysin and trysinogen in larval herring (Clupea harengus) digesting copepod nauplii. Mar Biol. 94: 171-181.

Potthoff T. 1984. Clearing and staining techniques. In: Lawrence KS, Moser HG, Richards WJ, Cohen DM, Fahay MP, Kendall AW Jr, Richardson SL, editors. Ontogeny and systematics of fishes. Special Publication 1. American Society of Ichthyologists and Herpetologist. p. 33-37.

Rodríguez-Graña L, Vera M, Cervetto G, Calliari DL. 2018. Trophic ecology of the White Croaker (Micropogonias fur-nieri Desmarest, 1823) and Rough Scad (Trachurus lathami Nichols, 1920) larvae in the Río de la Plata Estuary. In: Hoffmeyer M, Sabatini M, Brandini F, Calliari D, Santinelli N, editors. Plankton ecology of the Southwestern Atlantic. Cham: Springer. p. 349-371.

Rooker JR, Holt SA. 1997. Utilization of subtropical seagrass meadows by newly settled red drum (Sciaenops ocellatus): patterns of distribution and growth. Mar Ecol Prog Ser. 158: 139-149.

Secor HD. 2015. Migration ecology of marine fishes. Baltimore: Johns Hopkins University Press. 292 p.

Shea BT. 1985. Bivariate and multivariate growth allometry: statistical and biological considerations. J Zool. 206: 367-390.

Simionato CG, Berasategui AD, Meccia V, Acha EM, Mianzan H. 2008. Short time-scale wind forced variability in the Río de la Plata Estuary and its role on ichthyoplankton retention. Estuar Coast Shelf Sci. 76: 211-226.

Sinque C. 1980. Larvas de Sciaenidae (Teleostei) identificadas na região estuarino-lagunar de Cananéia. Universidade do São Paulo. Bol Zool. 5: 39-77.

Smith PE. 1985. Year class strength and survival of 0-group clupeoids. Can J Fish Aquat Sci. 42: 69-82.

Sogard SM. 1991. Interpretation of otolith microstructure in juvenile winter flounder (Pseudopleuronectes americanus): ontogenetic development, daily increment validation, and somatic growth relationships. Can J Fish Aquat Sci. 48: 1862-1871.

Taylor WR, Van Dyke GC. 1985. Revised procedures for staining and clearing small fishes and other vertebrates for bone and cartilage study. Cibium. 9 (2): 107-119.

Urho L. 2002. Characters of larvae-what are they? Folia Zool. 51: 161-186.

Weiss G. 1981. Ictioplancton del estuario de Lagoa dos Patos, Brasil [tesis doctoral]. La Plata: Facultad de Ciencias Naturales y Museo, Universidad Nacional de La Plata. 164 p.

Werner RG. 2002. Habitat requeriments In: Fuiman LA, Werner RG, editors. Fishery Science. The unique contributions of early life stages. Oxford: Blackwell Publishing. p. 161-182.

Wilson DT, McCormick MI. 1997. Spatial and temporal validation of settlement marks in the otoliths of tropical reef fishes. Mar Ecol Prog Ser. 153: 259-271.

Wilson DT, McCormick MI. 1999. Microstructure of settlement-marks in the otoliths of tropical reef fishes. Mar Biol. 134: 29-41.

Xie S, Watanabe Y, Saruwatari T, Masuda R, Yamashita Y, Sassa C, Konishi Y. 2005. Growth and morphological development of sagittal otoliths of larval and early juvenile Trachurus japonicus. J Fish Biol. 66: 1704-1719. DOI: https://doi.org/10.1111/j.0022-1112.2005.00717.x

Publicado

22-12-2020

Cómo citar

Braverman, M. S., Brown, D. y Acha, E. M. (2020) «La metamorfosis de la corvina rubia Micropogonias furnieri (Pisces, Sciaenidae)», Marine and Fishery Sciences (MAFIS), 33(2), pp. 163–182. doi: 10.47193/mafis.3322020301107.

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